Подготовка образцов к химическому анализу - Справочник химика 21

    Определение состава растительного материала начинается с отбора образца и подготовки его к анализу. Неправильный отбор образца делает бессмысленной дальнейшую работу. Если образец взят случайно, то, как бы тщательно ни были выполнены все операции по химическому определению содержания азота и зольных элементов. представление о его химическом составе будет неправильным. Поэтому взятию средней пробы. отбору аналитической пробы. подготовке образцов к анализу необходимо уделять большое внимание. Как уже было указано, вес средней пробы свежего растительного материала составляет 200—500 г, а во многих случаях достигает 1—2 кг. [c.39]

    Если задача определения брома ставится в плане многоэлементного анализа. ее стараются решить без разрушения анализируемой пробы, применяя эмиссионный спектральный. рентгенофлуоресцентный или инструментальный активационный методы. В других случаях проводят ту или иную подготовку образца к анализу, нередко подвергая его химическому разрушению. а после этого — отделяют бром от элементов, мешающих его определению. Разделению смесей может сопутствовать концентрирование определяемого элемента. При определении микроколичеств и в радиохимическом анализе концентрирование выступает в качестве задачи самостоятельного значения, но решается она теми же методами осаждения. экстракции, ионного обмена и отгонки, которые применяют для аналитического разделения. Выбор конкретного хода анализа и метода определения брома. естественно, зависит от характера поставленной аналитической задачи и состава объекта исследования. [c.162]

    Дело в том, что каждый процесс анализа условно делится на ряд основных стадий подготовка образцов к анализу разделение составляющих измерение с помощью специального метода сигнала. отвечающего отдельным составляющим вычисление состава анализируемого образца. Обычно не все эти стадии анализа удается автоматизировать полностью. Например, современные спектрофотометры автоматически измеряют поглощающую способность до пятидесяти образцов, поступающих в кювету. Отсчеты поглощающей способности автоматически поступают на встроенный в прибор цифровой индикатор и печатаются на электронной пишущей машинке. Однако две ступени анализа все-таки ограничивают возможности полной автоматизации чтобы подготовить стандартные растворы для спектрофотометрии, несколько химических операций должен выполнить сам аналитик участие человека необходимо также для интерпретации полученных цифровых данных. [c.336]

    Подготовка образцов к анализу. Для того чтобы проанализировать катализатор пламенно-фотометрическим методом. его необходимо перевести в раствор. Производится это в случае алюмосиликатных катализаторов следующим образом. Навеску в 0,5 г мелкорастертого катализатора помещают в колбу Кьельдаля (на 250 мл) или в химический стаканчик (на 100 мл), приливают 25 мл соляной кислоты и кипятят в течение 10 минут. После этого добавляют 25 мл азотной кислоты и нагревают при постоянной температуре в течение 20 мин. Затем приливают 15 мл дистиллированной воды и кипятят 10 мин. Полученный раствор пропускают через фильтр с пористым стеклом. осадок на фильтре промывают 5—8 мл дистиллированной воды. Фильтрат доводят до 50 мл. Установлено, что в результате такой обработки практически весь натрий, находящийся в катализаторе, переходит в раствор (нерастворимая часть остается в виде осадка). [c.23]

    В случае, когда окислительные реакции нежелательны, обработку образцов проводят в водородной плазме. Плазмохимическая подготовка образцов для анализов обычно осуществляется в ВЧ- или СВЧ-плазме при давлениях 0,5—1,5 торр в течение от нескольких секунд до нескольких часов в зависимости от структуры и химического состава образцов. [c.30]

    Выводы перечисленных работ базируются не на отдельных цифрах, а на десятках и даже сотнях результатов. Это — трудоемкая, но необходимая работа. И для того, чтобы изотопный анализ стал достоянием широкого круга исследователей — геохимиков, микробиологов, геологов и других специалистов, необходимо не только четко представлять сам прецизионный метод. но и знать его особенности и возможности. Кроме этого, требуется знание химической методики подготовки образцов для анализа. Но получить правильное представление об этом крайне трудно. Такое положение объясняется отсутствием работ, специально посвященных этим вопросам. Более того, в периодической литературе опубликованы только небольшие статьи, которые слишком специальны и схематичны. По этим отдельным работам можно понять только в общих чертах основы данного метода. но в них не дается математическое обоснование и не указываются детали, которые играют важную роль при прецизионном анализе. [c.4]

    Технологические образцы, как правило, загрязнены механическими примесями. концентрация которых не постоянна. При создании промышленных автоматических анализаторов и разработке устройств подготовки образцов учитывается возможность появления в анализируемой среде примесей переменной концентрации. Так, для уменьшения влияния таких примесей применяют однолучевые двухканальные ИК-анализаторы, у которых сигналы, обусловленные изменением концентраций примесей, в обоих каналах равны и поэтому компенсируются друг другом. Кроме того, устройства подготовки образца к анализу снабжают фильтрами, которые снижают содержание примесей в образце (до 100 мг/л). В этих условиях при использовании однолучевого двухканального ИК-анализатора механические примеси ne влияют на точность анализа. При проведении лабораторных спектрометрических анализов механические примеси удаляют отстаиванием в делительной воронке или фильтрованием. Неагрессивные жидкости можно очищать фильтрованием через бумажные фильтры. Для очистки химически активных жидкостей применяют фильтры из стекловолокна или фторопласта. Хорошей очистки достигают с помощью стеклянных фильтров. [c.173]

    При определении влажности в растительных образцах режим работы прибора строится таким образом. чтобы образцы растений не подвергались воздействию атмосферной влаги в течение всего времени, которое требуется для анализа. Кроме того, нагрев образцов производится в атмосфере инертного газа. когда, следовательно, химические превращения в образцах растений или вовсе не происходят, или происходят в таких ограниченных размерах. которые не могут оказать влияния на результаты анализа. Благодаря быстрой подготовке образцов к анализу и благодаря тому, что в процессе этой подготовки растения не деформируются (растения целиком поступают в анализ), можнО ручаться за то, что первоначальная величина влажности растений не искажается ни за счет потери влаги в атмосферу, ни за счет обводнения образцов атмосферной влагой. [c.111]

    Плазмохимическую подготовку образцов для анализов обычно проводят в ВЧ- или СВЧ-плазме при давлениях 60—200 Па продолжительностью от нескольких секунд до нескольких часов в зависимости от структуры и химического состава образцов. Обрабатывают образцы в виде порошков, плоских срезов, пленок, вспененных или пористых материалов, низколетучих жидкостей. [c.336]

    Первый вариант осложнен приготовлением стандартов. близких ио химическому составу и физическим характеристикам к составу анализируемых объектов. Чаще всего стандарты готовят на основе оксидов элементов. В большинстве случаев образцы подвергают термической обработке. Одним из стандарт[1ых приемов подготовки вещества к анализу для порошков сложного состава является разбавление проб графитовым порошком и введение специальных добавок. Такой прием позволяет уменьшить эффект фракционного исиарения и стабилизировать условия возбуждения спектров элементов. [c.118]

    Пересчет анализа на сухое вещество дает более удобное представление о химическом составе анализируемого материала, так как содержание в последнем гигроскопической влаги (а тем более и внешней влаги ) может колебаться в зависимости от температуры и влажности воздуха и от других причин. Содержание гигроскопической влаги меняется даже в зависимости от степени измельчения пробы при подготовке ее к анализу (например, чем тоньше измельчена проба, тем больше она может поглотить влаги из воздуха). Поэтому пересчет на сухое вещество позволяет сравнивать различные образцы одного и того же материала, если они содержат различные количества влаги. а также результаты различных определений одного и того же образца. [c.51]

    Ход анализа. Подготовка образцов и химическое концентрирование примесей. Куски -кварца, завернутые в толстую пленку фторопласта. осторожно разбивают на мелкие осколки, которые протравливают в закрытых У/ [c.79]

    В общем случае ход качественного химического анализа вещества включает следующие основные этапы подготовка вещества к анализу и отбор средней пробы. а затем — анализируемой пробы ггредварительные наблюдения и испытания перевод анализируемого образца в раствор (его растворение) открытие каиганов открытие анионов. [c.502]

    Подготовка образцов для спектрального анализа является очень важной и ответственной задачей, а нередко более сложной и длительной операцией, чем сам спектральный анализ Это объясняется тем, что заключение о химическом составе проб дается на основании анализа очень небольшого количества вещества (10—50 мг). В этом небольшом количестве должен найти свое отражение точный химический состав образца исследуемого минерала, руды или горной породы. [c.65]

    Перед подготовкой пробы для химического анализа должно быть сделано полное описание ее цвета, текстуры и всех других макроскопических характеристик. В некоторых случаях целесообразно иметь фотографический снимок образца. За исключением очень мягких пород. таких как глины, сланцы. шламы и мягкие песчаники, поверхности всех образцов нужно промыть проточной водой и сполоснуть дистиллированной. Затем образец сушат в атмосфере или в токе сжатого воздуха. [c.78]

    Другим не менее важным достоинством активационного анализа является независимость его результатов от чистоты реактивов, применяемых при подготовке образца к определению. Как известно, это обстоятельство сильно затрудняет реализацию высокой чувствительности химических и физико-химических методов анализа (спектрального, калориметрического и т. д.). [c.561]

    Методика подготовки средней пробы для химического анализа зависит от специфики исследуемого продукта, а в отдельных случаях и определяемого вещества (например, витаминов С, Е, А и р-каротина). Способ подготовки образца должен обеспечивать сохранность нативных свойств продукта. не допускать потерь (например, влаги), разрушения или видоизменения соединений, входящих в состав продукта. равно как и внесения извне посторонних компонентов [3, 4]. [c.186]

    На точность и чувствительность анализа оказывает влияние и химическая подготовка образца. В некоторых случаях большая чувствительность метода может остаться теоретической, если не будут приняты все меры по предотвращению [c.133]

    Следует указать еще, что при выполнении золь-гель-анализа специальной проверке подлежат также выбор необходимого времени экстракции и вопросы, связанные с подготовкой образца полимера для экстракции. К ним относятся выбор метода диспергирования образца, экспериментальное определение необходимой дисперсности частиц. доказательство отсутствия ые-хано-химических процессов в процессе дробления. [c.33]

    Выбор метода анализа — задача достаточно сложная, так как леобходимо учитывать метрологические характеристики (предел обнаружения. воспроизводимость и ошибку определения элемента), химический состав и количество пробы. производительность, число определяемых кроме серы элементов н возможные ошибки анализа. связанные с их присутствием, и т. д. Отметим, что зачастую сера в нефтепродуктах содержится в микроколичествах, поэтому при выборе и разработке методики ее определения необходимо принимать меры к уменьшению или даже полному устранению потенциальных источников погрешностей. обусловленных отбором проб. хранением нефтяных продуктов, стабильностью стандартных веществ. чистотой в лаборатории [1, 2]. Особое внимание следует обратить на возможные потери определяемого элемента и загрязнение анализируемого образца при подготовке его к анализу. [c.42]

    Начальная стадия подготовки пробы для химического анализа состоит в измельчении образца на куски размером приблизительно 1—2 см при помощи стального молотка или стандартной дробилки для пород. Каждую фракцию затем сортируют по кучкам. Некоторые из этих кусочков могут быть также отобраны как порода, если на предварительной стадии проба не подвергалась микроскопическому исследованию. Во многих лабораториях несколько таких кусочков сохраняют в склянках для будущих справок. Тонкую фракцию па этой стадии измельчения отбрасывают, так как она почти всегда загрязнена металлом от молотка или от щек дробилки. Начиная с этой стадии дальнейшая подготовка пробы проводится с большей тщательностью. При растирании получающийся порошок может загрязниться, а некоторые из компонентов, особенно минералы, содержащие закисное железо. — окислиться. Эти помехи давно известны, их почти невозможно устранить, но особым вниманием к деталям их обычно снижают до приемлемого уровня. [c.78]

Подготовка образцов в микроскопии

Существует множество причин для исследования клеток и тканей человека. Медицинские и биологические исследования опираются на знания о стандартном строении и функционировании клеток и тканей, и структур, которые они составляют. В здоровом состоянии клетки и другие тканевые элементы организованы на основе постоянных и узнаваемых форм. Изменения, вызываемые воздействием широкого спектра химических и физических факторов, выражаются в структурных изменениях на микроскопическом уровне. Для многих заболеваний характерны структурные и химические аномалии, отличающиеся от нормального состояния. Выявление этих изменений и привязка их к конкретным заболеваниям является основой патогистологии и цитопатологии, важными специальностями современной медицины. Микроскопия играет важную роль в гематологии (исследования крови), микробиологии (изучение микроорганизмов, в том числе паразитов и вирусов), и в более широком смысле в областях биологии, зоологии и ботаники. Во всех этих дисциплинах образцы изучаются с помощью микроскопа.

Существует много различных видов микроскопии, но наиболее часто используемый – это светлопольная микроскопия, в которой образцы просвечиваются пучком света, проходящим через них (в отличие от пучка электронов в электронной микроскопии). Общие требования к образцам для наиболее эффективного исследования с помощью светлопольной микроскопии:

• Клетки и другие элементы в образце должны храниться в «жизнеподобном» состоянии (данный процесс называется «фиксация»);
• Образец должен быть прозрачным, нежели светонепроницаемым, для того, чтобы свет мог проходить через него;
• Образец должен быть тонким и плоским, то есть должен присутствовать только один слой клеток;
• Некоторые компоненты должны быть дифференциально окрашены, так они смогут быть четко различимы.

Из-за требований микроскопии подготовка образцов ограничена следующими способами:

• Целостное закрепление образца, при котором весь организм является достаточно небольшим и тонким для того, чтобы быть размещенным непосредственно на предметном стекле микроскопа ;
• «Сплющивание» образца, при котором клетки специально сплющены на предметном стекле для того, чтобы раскрыть их содержание (например, растительные образцы, где клетки разрушаются для выявления хромосом);
• Мазки, где образец состоит из клеток, находящихся в жидкости (например, в крови, сперме или спинномозговой жидкости), или где отдельные клетки соскребаются с поверхности или аспирируются (всасываются) из органа (эксфолиативная цитология). Мазки являются основой известного теста Папаниколау, используемого для выявления рака шейки матки у женщин;
• Резка, при которой образцы удерживаются таким образом, чтобы была возможность отрезать от них тонкие фрагменты, закрепить на предметном стекле и окрасить. Фрагменты подготавливаются с использованием специального прибора – микротома

Из всех этих вариантов только целостное закрепление и резка позволяют сохранить структурные связи между отдельными клетками и внеклеточными компонентами. Мазки и сплющивание предоставляют детальные сведения об отдельных клетках и относительном числе клеток, однако структурные связи утрачиваются. Подготовка срезов является технически наиболее сложным из этих методов, так как требует специализированного оборудования и значительного опыта. Микроскопическое исследование срезов патологоанатомами является краеугольным камнем в диагностике рака. Хотя методика подготовки срезов из животного и растительного материала одинакова, последующее описание относится к тканям животных (человека).

Самая свежая ткань является очень чувствительной к воздействиям, легко подверженной к деформациям и повреждениям, и поэтому невозможно подготовить тонкие фрагменты (срезы), если образец не поддерживается во время резки. Также обычно образец нуждается в «фиксации» перед подготовкой срезов. В целом существуют две стратегии, которые могут быть использованы для того, чтобы обеспечить эту поддержку.

1. Ткани могут быть быстро заморожены и поддерживаться в таком состоянии во время резки с использованием криостатного микротома (микротом в морозильной камере). Такие фрагменты называются «замороженными срезами». Замороженные срезы могут быть подготовлены очень быстро, и поэтому используются, когда интраоперационное исследование необходимо для проведения хирургических процедур или тогда, когда необходимо избежать любого вмешательства в химический состав клеток (как при некоторых гистохимических исследованиях).
2. В качестве альтернативы, образцы могут быть пропитаны жидким веществом, которое впоследствии может быть преобразовано в твердое тело, обладающее необходимыми физическими свойствами, что позволит отрезать от него тонкие фрагменты. Используются различные вещества для пропитки и поддержки образцов, в том числе эпоксидная смола и смолы метакрилата, но гистологический парафин является самым популярным средством для обычной световой микроскопии. С его помощью получают так называемые «парафиновые срезы». Такие срезы обычно подготавливаются с использованием роторного микротома. Слово «роторный» описывает способ резки данного инструмента. Во всех гистопатологических лабораториях парафиновые срезы подготавливают почти из всех образцов и используют в диагностике.

В нижеследующих пунктах описываются основные шаги при подготовке парафиновых срезов. Эти шаги в целом диктуют план и рабочий процесс в крупных, специализированных гистопатологических лабораториях, где ежедневно обрабатываются сотни образцов.

Рис. 1. Срез для диагностики подготавливается с помощью криостатного микротома. Срез, полученный из мгновенно замороженной ткани снимается на теплое стекло, где он будет незамедлительно зафиксирован и окрашен.

Рис. 2. Роторный микротом используется для подготовки парафиновых срезов. На переднем плане лента из срезов «выходит» готовой для крепления к стеклу микроскопа.

Образцы, полученные для гистологического исследования, могут происходить из ряда различных источников. Они варьируются от очень крупных экземпляров или целых органов до крошечных фрагментов ткани. Например, ниже приводятся несколько типов образцов обычно получаемыми в гистопатологических лабораториях.

• Удаленные образцы (хирургическая биопсия), где целые органы или поврежденные участки удаляются при операции;
• Образцы, полученные с помощью инцизионной биопсии, где для диагностики ткань забирается с пораженного участка;
• Образцы, полученные с использованием щипковой биопсия, при которой используется круговое лезвие для того, чтобы удалить небольшой участок подозрительной ткани для исследования (часто из кожи);
• Скарификационная биопсия, где маленькие фрагменты ткани срезаются с поверхности (как правило, кожи);
• Кюретажная биопсия, при которой маленькие кусочки ткани удаляются со слизистой оболочки матки или шейки матки;
• Сердцевинная биопсия, когда небольшой образец удаляется с помощью специальной иглы, иногда через кожу (перкутанно).

Образцы обычно получают в фиксаторе (консерванте), но иногда они поступают свежими и должны быть незамедлительно зафиксированы. До того, как образцы будут приняты в лаборатории, маркировки и сопроводительные документы тщательно проверяются, все детали записываются, и начинается "отслеживание образца".

Рис. 3. Свежие, незафиксированные образцы после хирургического удаления. Чтобы предотвратить дегенерацию или высыхание образца, он должен быть зафиксирован как можно скорее.

Фиксация является важнейшим шагом в процессе подготовки образцов для микроскопического исследования. Ее цель заключается в предотвращении процесса разрушения и сохранении клеток и тканей в «жизнеподобном» состоянии. Это происходит путем остановки активности ферментов, уничтожения микроорганизмов и затвердевания образца при сохранении достаточной молекулярной структуры, позволяющей использовать необходимые методы окрашивания (в том числе с применением реакции антиген-антитело и других реакций, в зависимости от сохранения ДНК и РНК). Чем раньше начат процесс фиксации после отделения образца от кровоснабжения, тем лучше будет результат. Самый популярный фиксирующий агент – это формальдегид, обычно в форме натрий-фосфатного буфера (часто упоминается как «формалин»). В идеале образцы должны быть зафиксированы путем погружения в формалин на срок от шести до двенадцати часов, прежде чем они будут использоваться.

Рис. 4. Хирургические образцы в процессе фиксации в формалине. Обратите внимание, что объем консерванта значительно превышает размеры образцов. Кассета, в которой будут находиться образцы во время обработки, уже имеет маркер с идентификаторами пациента.

Рис. 5. Этот хирургический образец желудка был зафиксирован в формалине. Элементы толщиной около 4 мм теперь будут взяты из соответствующих областей и помещены в маркированные кассеты для обработки.

Для больших партий образцов, подготовка «парафиновых срезов» автоматизирована с помощью инструмента под названием «тканевый процессор». Эти инструменты позволяют образцам последовательно пропитываться различными растворителями и расплавленным парафином, завершающим данный процесс. В начале образцы находятся в водной среде (на водной основе) и должны пройти через несколько преобразований: обезвоживание и очистка растворителями (как правило, этанолом и ксилолом), прежде чем быть помещенными в расплавленный воск (который является гидрофобным и не смешивается с водой). Длительность и детали промежуточных шагов «плана обработки» для конкретной партии будут зависеть от происхождения и размера образцов. План может быть, как один час для небольших образцов, так и двенадцать часов или более для больших образцов. Во многих лабораториях основная обработка проводится ночью. Из-за стремления улучшить рабочий процесс и сократить сроки, в настоящее время оказывается заметное давление на лаборатории с целью использовать процессоры, способные производить быструю обработку.

Рис. 6. Тканевый процессор загружается корзиной с кассетами, содержащими образцы ткани для обработки. Подробные сведения о процессе обработки и план отображаются на экране процессора.

После обработки образцы помещаются в заливочный центр, где они извлекаются из кассет и помещаются в формы, заполненные парафином. На этом этапе образцы аккуратно ориентируются, потому что это будет определять плоскость, через которую они будут разрезаны на фрагменты, а также определять, будут ли аномальные зоны видны через микроскоп. Кассеты, в которых производилась обработка, содержат данные для идентификации образцов, и теперь они помещаются сверху формы и закрепляются добавлением парафина. Блоку образцов дают затвердеть на холодной поверхности, а затем форма снимается. Кассеты, заполненные парафином, являются неотъемлемой частью блока и обеспечивают устойчивую основу для зажима в микроскопе. Блок, содержащий образец, готов для резки на фрагменты.

Рис. 7. Заливочный центр помогает оператору, так как объединяет холодную панель, горячую панель и контролируемый поток расплавленного парафина.

Рис. 8. Образец желудка размещен и ориентирован в заливочной форме на горячей панели заливочного центра.

Рис. 9. Блок готов для микротомии. Образец желудка, который был обработан и залит, готов к подготовке срезов с помощью микротома. Бледно-синяя кассета была использована для того, чтобы держать образец во время обработки, и сейчас является частью «блока». Она будет зажата в держателе образца, и фрагменты будут отрезаны от лицевой части блока.

Фрагменты отрезаются с помощью высокоточного инструмента, называемого «микротом», который использует очень тонкие стальные лезвия. Парафиновые срезы обычно отрезают при толщине в 3-5 мкм, гарантируя, что срез состоит только из одного слоя клеток (красные клетки крови имеют диаметр около 7 мкм). Одним из преимуществ парафина, как заливочного агента, является то, что при резке фрагменты будут держаться вместе от края до края, образуя «ленты» из срезов. Это делает обработку проще.

Теперь срезы «выходят» на поверхность теплой воды в флотационной ванне для того, чтобы разгладить их, а затем снять на предметные стекла микроскопа. После тщательной просушки они готовы к окрашиванию.

Рис. 10. Лента со срезами отрезается от парафинового блока с помощью роторного микротома. Обратите внимание, что срезы толщиной 4 мкм (4/1000 миллиметра) показывают малую деформацию и разрушение.

Рис. 11. Парафиновый срез устанавливается на стекло микроскопа после теплой воды, использованной для разглаживания.

Помимо нескольких естественных пигментов, таких как меланин, клетки и другие элементы, составляющие большинство образцов бесцветные. Для того, чтобы выявить структурные детали с помощью светлопольной микроскопии, используются некоторые способы окрашивания. Окраска гематоксилином и эозином (H&E) повсеместно используется как отправная точка для предоставления важнейшей структурной информации. С помощью этого метода ядра клетки окрашиваются синим, а цитоплазма и многие дополнительные клеточные компоненты окрашиваются в оттенки розового. В гистопатологии многие состояния могут быть выявлены путем исследования только H&E.Однако иногда требуется дополнительная информация для того, чтобы обеспечить полную дифференциальную диагностику, а это требует дальнейшего, более специализированного метода окрашивания. Это могут быть «специальные пятна», сделанные с помощью красителей или металлических вкраплений для определения конкретной структуры микроорганизмов, или это могут быть иммунно-гистохимические методы, охватывающие расположение диагностически полезных белков с помощью отмеченных антител. Молекулярные методы, такие как гибридизация in-situ (ISH), также могут быть необходимыми для выявления специфических последовательностей ДНК или РНК. Все эти методы могут быть применены на парафиновых срезах, и в большинстве случаев полученные срезы полностью стабильны и могут храниться в течение многих лет.

После окрашивания, срезы покрываются покровным стеклом. после чего отправляются к патологоанатому, который будет рассматривать их под микроскопом, чтобы поставить правильный диагноз и подготовить отчет.

Рис. 12. Окраска гематоксилином и эозином. Это микроскопическое изображение (микрофотография) парафинового среза стенки человеческого аппендикса, полученное с помощью светлопольной микроскопии. Клетки окрашены синим цветом, а гладкие мышцы, коллаген и другие компоненты открашены в оттенки розового. Большие пустые пространства относятся к жировым клеткам, жиры были растворены во время обработки.

Рис. 13. Стойка для парафиновых срезов загружается в автоматизированный инструмент для окраски гематоксилином и эозином. Этот инструмент позволит окрасить элементы, а прилегающая система по подготовке срезов приложит покровное стекло, чтобы сохранить их и обеспечить оптимальные оптические условия для микроскопии.

Geoffrey Rolls, консультант по гистологии, Leica Biosystems, Мельбурн, Австралия, имеет большой практический опыт и опыт в преподавании гистологии и гистотехнологии, в том числе 30 лет в качестве старшего преподавателя кафедры лабораторной медицины университета RMIT в Мельбурне, Австралия. Он имеет научную степень и профессиональное членство в австралийском Институте молодых ученых. Имеет большой интерес к гистотехнологии, особенно в областях обработки тканей, микротомии и общего образования по гистологии. В последние десять лет он выступал в качестве консультанта для Leica Biosystems.