Гнезда для кур несушек с яйцесборником своими руками

Опытные птичники уже давно для себя решили, что стандартные методы разведения кур не всегда приносят отличные результаты, поэтому стоит искать оригинальные решения. Оборудование гнезда для несушек — важная составляющая правильного разведения. В нашей статье приведены основные типы подобных сооружений, а также есть подробная инструкция по самостоятельному сооружению таких приспособлений.

Как выглядят куры породы Доминант, указано в статье.

Большинство птичников рано или поздно сталкиваются с проблемой, что искать яйца приходится в самых неожиданных местах. Особенно это актуально в летнее время, когда птицы сносят яйца в любых подходящих укромных местах.

Чтобы избежать такой проблемы и всегда точно собирать «урожай», рекомендуется устраивать отдельные места для таких целей. Также это делается из соображений безопасности, ведь многие курицы охотно поедают только что снесенное яйцо. Избежать этого можно при сооружении специального яйцесборника, в котором потом и находится яйцо.

Что из себя представляет загорская лососевая порода кур, можно узнать из данной статьи.

В принципе, для куриного гнезда подойдут любые подходящие емкости: картонные коробки, пластиковые фляги больших размеров и даже старые мебельные ящики. В таких конструкциях будет удобно нестись курице, а хозяин будет избавлен от сомнительного удовольствия ежедневно искать «клад» по всей территории курятника и вольера.

В другой стороны, даже при достаточном и разнообразном питании, куры часто начинают клевать свои яйца. Это явление может стать настоящим стихийным бедствием для полноценного разведения и содержания птицы. Чтобы усовершенствовать конструкцию и обезопасить яйца от посягательств птиц, можно дополнительно оснастить коробку специальным яйцесборником, в который куры добраться не смогут.

На видео — гнезда для кур несушек с яйцесборником:

Подобные модели часто можно встретить в продаже, ассортимент соответствующих магазинов предлагает широкий выбор всевозможных моделей из самых различных материалов. Оптимально приобретать стандартные клетки из фанеры, но в принципе подойдут любые материалы.

Подробней схематическое устройство таких приспособлений можно рассмотреть на фото.

Использование таких гнезд имеет ряд преимуществ:

• Обеспечиваются комфортные условия для несушек.
• Яйца будет целыми и защищены от остальных обитателей курятника.
• Сбор и поиски яиц значительно упростится.
• Расширение полезной площади курятника.

На видео -гнездо с яйцесборником своими руками:

Приобрести такие приспособления несложно, большинство специальных сайтов и магазинов соответствующей тематики предлагают широкий выбор готовых гнезд. В основном это продукция отечественных производителей местного масштаба. Многие умельцы делают подобные конструкции самостоятельно. Стоимость готовых гнезд варьируется от 2 $ за «одноместный» номер.

Как выглядит кура породы мара н, можно узнать из данной статьи.

Несложно сделать их и своими руками, особенно если воспользоваться нижеприведенной инструкцией.

Сделать «правильное» гнездо не так уж и сложно, даже при минимальном опыте подобных работ. Для этого необходимо приготовить все необходимые материалы и прикинуть схематическое расположение и габариты сооружения.

Почему куры лысеют. можно узнать из данной статьи.

Оптимально установить такие приспособления в тихом затемненном углу курятника или на некотором возвышении, вдали от основных маршрутов. Комфортные размеры гнезда должны учитывать основные габариты птиц, для удобства гнездо делают без передней и верхней части. Для того, чтобы оборудовать гнездо яйцесборником, достаточно сделать немного наклонный уровень пола, чтобы снесенное яйцо скатывалось в задней стенке. Там необходимо оборудовать специальный отсек для хранения яиц. Он должен быть облицован мягким материалом, играющим роль амортизатора. Для того, чтобы курица не имела доступа в яйцесборник, его вход лучше закрыть листом войлока или линолеума, который будет автоматически открываться под весом яйца.

На видео — чертеж гнезда с яйцесборником:

Мягкая подстилка — главная хитрость подобного устройства, поэтому ее оборудование занимает важное место в конструкции. При этом желательно использовать мягкие и натуральные материалы. Чтобы заманить курицу в гнездо, можно подстелить соломки, которая сыграет роль естественного гнездовья птиц.

Инструкция по сооружению куриного гнезда:

• Приготовить необходимый материал: фанера, ДСП или толстый пластик подойдут идеально.
• Выполнить схематический чертеж, учитывая свободную площадь курятника и средние габариты птиц.
• Выполнить раскрой материалов.
• Соединить все части между собой, используя подходящие метизы или клеевой состав.
• Пол в конструкции необходимо сделать достаточно наклонным, чтобы яйцо беспрепятственно скатывалось. При этом пол не должен создавать дискомфорт для нахождения там птицы.
• В зависимости от задумки, сборник может находиться на задней стенке, сбоку или спереди. Отверстие для хранения яиц должно закрываться плотным листом. Отлично подойдет кусок линолеума, войлока и просто непрозрачный целлофан.
• Дно конструкции накрыть мягкой подстилкой. Отлично подойдет солома, опилки и просто кусок старой напольной дорожки.

Как выглядит порода кур Билефельдер, можно увидеть в описании к статье.

На видео — гнезда для курей с яйцесборником:

Оборудование курятника — дело чрезвычайно ответственное, требующее тщательного подхода. Современный ассортимент фермерских товаром предлагает огромный выбор всевозможных сооружений. При этом вовсе необязательно тратить большие суммы, многие сооружения вполне по силам и для самостоятельного монтажа.

Что из себя представляет кучинская юбилейная порода кур, можно узнать прочитав статью.

Выполнив такое гнездо с яйцесборником, вы навсегда избавитесь от проблемы поиска и сохранности яиц, а также значительно модернизируете площадь курятника. Использовать такие гнезда можно и при клеточном содержании кур – несушек, а также для контроля яйценоскости отдельно взятой птицы. Приложенные схемы и фотографии помогут лучше разобраться с конструкции приспособления, а краткая инструкция подойдет для самостоятельного монтажа.

Как выглядит кура пушкинской породы, можно узнать в данной статье.

Людмила: «Кур мы держим на даче, зимой наведываемся туда примерно раз в три дня, поэтому современные автоматические кормушки и поилки пришлись кстати. В прошлом году нашла в интернете описание подобных гнезд, сильно загорелись и муж сделал подобную конструкцию самостоятельно. Результат превосходный, все яйца целые и чистые, очень удобно собирать. После нескольких месяцев использования, мы немного модернизировали конструкцию, теперь там находится специальная полоска толстой резины, которая с одной стороны выдвигается, что позволяет собрать сразу все яйца. Чтобы они не повреждали друг друга, через каждые 15 сантиметров стоит перегородка из войлока.»

Выращивание кур-несушек в домашних условиях: инструкции и видео

Бизнес, связанный с процессом выведения и выращивания кур является достаточно доходным и рентабельным. Куриные мясо и яйца относятся к диетической продукции, обладающие спросом на рынке. Такой вид бизнеса близок сельским жителям, и тем, у кого есть загородная недвижимость. Преимуществом такого бизнеса также является его безотходность, в сбытовых целях используются яйца, пух, мясо и куриный помет, используемый как органическое удобрение. Следовательно, данный бизнес является крайне востребованным и выгодным для осуществления в домашних условиях.

На сегодняшний момент времени выведено большое количество пород яйценосных кур. Выбор определенной породы необходимо производить в зависимости от продуктивности и возможности адаптации к разным условиям. Такие куры отличаются от других видов тем, что они не заинтересованы в продолжение рода и яйца несут без цели дальнейшего высиживания. Разведением кур несушек занимаются с целью получения качественных и хороших яиц, поскольку такие куры несут в год более трехсот яиц.

Осуществляя выбор определенной породы кур, необходимо учитывать, что ученые постоянно выводят новые их разновидности. На сегодняшний момент важно сделать акцент на нескольких наиболее популяризированных породах.

Ломан Браун являются одними из самых продуктивных пород. К возрасту пятидесяти двух недель несушка способна нести яйца прядка трехсот штук в год. Их скорлупа имеет буроватую расцветку, а вес превышает 60 грамм.

Леггорн также имеют высокую популярность и производительность. С возраста восемнадцати недель несушка имеет способность нести яйца около двухсот пятидесяти штук в год. Скорлупа таких яиц имеет белый цвет, и массу 55 грамм. Наивысшая степень яйценоскости наступает в первый год, после продуктивность таких кур несколько снижается.

Кучинские юбилейные куры имеют способность нестись с пяти месяцев. В первый год продуктивность данной породы может достигать ста восьмидесяти яиц, при создании всех необходимых условий более двухсот пятидесяти в течение года. Их яйца имею светлое буровато-коричневое окрашивание, а вес их достигает 60 грамм.

Хайсекс Браун также являются одними из самых продуктивных и популярных пород. К возрасту восьмидесяти недель несушка данной породы способна нести прядка трехсот шестидесяти яиц в год. Скорлупа имею бурую раскраску, а вес их превышает 70 грамм. Эту разновидность пород предпочитают выводить птицеводы.

Важным условием, необходимым для создания сухих и чистых условий содержания кур, является вентиляция помещения птичника. Вентиляцию необходимо установить таким образом, чтобы в нее не пробрались различные грызуны. Влажность в помещении не должна быть выше шестидесяти пяти процентов, поскольку цыплята имеют высокую степень восприимчивости к влажности.

Помещение, предназначенное для содержания кур, не должно иметь большую высоту, не более двух метров. Температура для правильного разведения потомства не должна быть выше 27 градусов. Отверстие для входа важно установить со стороны востока. На задней стороне птичника смонтировать из деревянных дощечек насесты. Насесты необходимо расположить выше уровня пола на 25 см. В углах помещения необходимо расположить гнезда для кладки яиц, в виде которых можно использовать деревянные ящики с опилками и соломой. На полу помещения можно расстелить подстилку, которая будет впитывать излишнюю влагу, и служить теплоизолирующим материалом. Важно содержать гнезда в идеальной чистоте, поскольку куры несутся с удовольствием в затемненном и чистом помещении.

Главным фактором, влияющим на рацион кур, является их возраст. В течение активного роста и высокой продуктивности курице требуется высококалорийный корм. Данный период приходится на 28-49 неделю их жизни.

В период детства и до 27 недели несушке необходимо давать определенную норму зерна и муки. Постепенно начиная с двадцатой недели зерно необходимо заменять кормом собственного приготовления.

В период активной продуктивности питание курицы должно быть разнообразным и способствовать ее высокой продуктивности. Корма можно использовать сухие либо разведенные на воде или бульоне. В такой период времени несушка должна получать до 120 грамм корма в сутки. Кормить их необходимо два раза, утром мягкой пищей и вечером более грубыми культурами. Важно также поддерживать необходимый баланс витаминов и минералов в корме.

После падения продуктивности кур рацион питания не стоит сильно менять при кормлении комбикормом. При кормлении собственноручно приготовленным кормом необходимо в рацион добавлять тыкву и ячмень.

При уходе за несушками для их содержания используют клетки с возможностью выгула птицы на открытом воздухе, где она находится под воздействием солнечных лучей. В данном помещении размещают по четыре куры несушки. В случае большого количества разведенных кур используют клеточные батарей, которые облегчают уход и кормление кур.

Помещение птичника застилается опилками или другими какими-либо материалами. По мере замусоривания данного подстила пометом, его необходимо менять на новый, в целях соблюдения чистоты. Кормушка и поилка должна быть на высоте груди птицы для достижения удобства питания.

При осуществлении процесса ухода за курами несушками необходимо, чтобы летом они проводили время на воздухе и солнечном месте. В целях предостережения возможности заболеваний птиц важно давать курам сбалансированный корм с витамином С, в летнее время давать больше зелени, а в зимнее сено или травяную муку.

Таким образом, правильный уход, чистое содержание и качественное питание птицы способствует повышению ее продуктивности и хорошему росту.

Предлагаем вам ознакомиться с видео-уроком по выращиванию кур несушек с нуля и создание дренажной системы

Куриное мясо и яйца являются доходным и прибыльным видом бизнеса. Более высокого дохода и продуктивности несушек можно достичь за счет рационально питания. Осуществлять реализацию яиц и мяса можно на городском рынке.

Затратами бизнеса будут лишь затраты на кормление кур. Затрат на содержание и уход ни практически не требуются. В месяц на одну птицу уходит комбикорма в районе пятидесяти рублей. Несушка в месяц приносит до двадцати пяти яиц, соответственно прибыль бизнеса составит около ста рублей с одной несушки. Если использовать свои корма, добавляя пищевые отходы и молодую зелень, можно сэкономить на затратах. Бизнес, связанный с продажей куриных яиц, окупится уже в первый год осуществления.

Инфекционный бронхит птиц

[Avian Infectious Bronchitis, Infectious Bronchitis of baby Chicken (англ.); Infectiose Bronchitis des Huhnes, Austeokende tracheobronchitis der Kuken (нем.); Bronchite Infectiouse (франц.)]

Инфекционный бронхит (ИБ) — болезнь, поражающая кур. У цыплят проявляется респираторным и уремическим синдромами, у кур — поражением герминативных органов, что ведет к длительному снижению яйценоскости. Болезнь встречается во всех странах, где птицеводство поставлено на промышленную основу.

Впервые вирус выделили Бич и Шалк в США в 1936 г. ВИБ — первый, описанный в литературе коронавирус птиц и первый коронавирус, в геноме которого полностью определена последовательность нуклеотидов. Сравнение нуклеотидной последовательности генов нуклеокапсида трех штаммов ВИБ (Grey, Arcansas 99 и Holland 52) свидетельствует об их высокой консервативности (гомология 91,1—96,5).

Симптомы и патологоанатомические изменения. Отмечают три клинических синдрома: респираторный, нефрозно-нефритный и репродуктивный.

Респираторный синдром проявляется у молодняка и характеризуется кашлем, трахеальными хрипами, носовыми истечениями, затрудненным дыханием (с открытым клювом), иногда конъюнктивитом, ринитом и синуситом. Высокая летальность наблюдается, главным образом, среди цыплят до месячного возраста, у 2—3-месячного молодняка она может достигать 90 %, но чаще бывает в пределах 10—35 %. У цыплят 30—60-дневного возраста болезнь протекает, как правило, хронически и в ассоциации с колибактериозом и микоплазмозом. При патологоанатомическом вскрытии обнаруживают серозный, катаральный или казеозный экссудат в трахее или бронхах.

Некоторые штаммы вируса обладают нефротропностью (нефрозно-нефритный синдром) и могут в течение первых двух недель поражать почки и мочеточники с отложением уратов. Течение болезни — острое. У больных птиц отмечают депрессию и диарею с примесью уратов. При первичной циркуляции вируса в хозяйстве летальность птицы достигает 50—70 %. При патологоанатомическом вскрытии обнаруживают набухание почек и пестроту рисунка. Микроскопические изменения варьируют от нефрита до некротического нефроза.

Выделенный в Китае местный штамм D IBV вызывал тяжелое опухание железистого желудка у цыплят. В электронном микроскопе были выявлены вирусные частицы, которые были покрыты оболочкой и имели характерные булавовидные выпячивания по поверхности. Диаметр вирионов был около 80—140 нм. Аллантоисная жидкость инфицированного куриного эмбриона после обработки 1 % Трипсином в течение одного часа обладала гемагглютинирующей активностью. Гибель эмбрионов и их карликовость увеличивались после серийных пассажей. К 5-му пассажу наблюдались характерные изменения эмбриона, который округлялся, амнион утолщался и тесно прилегал к нему, эмбрион переставал расти и погибал. Тот же вирус выделялся от 10-дневных SPF цыплят при тяжелом провентрикулите, индуцированным после введения суспензии пораженной ткани железистого желудка от погибших цыплят.

Поражение репродуктивных органов (репродуктивный синдром) регистрируется обычно у кур старше 6 месяцев. Заболевание протекает бессимптомно или с незначительным поражением органов дыхания. Единственным проявлением болезни в этих случаях является длительное снижение яйценоскости на 30—80 %, которое зависит от возраста птицы. В дальнейшем яйценоскость восстанавливается, но не достигает прежнего уровня. Больные куры несут мелкие, неправильной формы яйца с тонкой скорлупой. При патологоанатомическом исследовании кур, переболевших ИБ в раннем возрасте, часто наблюдают инфантильное состояние всего яйцевода, недоразвитость яйцевых фолликул.

В крупных птицехозяйствах ИБ имеет стационарный характер и протекает как хроническая инфекция без ярко выраженных симптомов поражения респираторных органов; цыплят в более уязвимом возрасте (1—30 дней) в значительной степени защищает пассивный иммунитет. Поражение репродуктивного тракта у цыплят и кур неизбежно приводит к снижению яйценоскости. Только вирусологические исследования и анализ экономических показателей выращивания цыплят и продуктивности кур дают возможность диагностировать ИБ, протекающий хронически или в ассоциации с другими болезнями.

Острое течение ИБ характеризуется контагиозностью, массовой заболеваемостью, значительным снижением продуктивности, проявлением респираторных признаков болезни и появлением деформированных мелких яиц.

Морфология и химический состав. Анализ последовательностей гена S1 австралийских штаммов ВИБ Позволил идентифицировать две генотипически различных группы. Шт. VicS, V5/90, N1/62, N3/62, N9/74 и N2/75 относятся к группе I. Все штаммы группы 1 способны размножаться в трахее и почках, но только четыре из них (VicS, N1/62, N9/74, и N2/75) являются нефропатогенными с летальностью 32—96 %. К группе 2 отнесены шт. N1/88, 03/88 и V18/91, которые размножаются лишь в трахее и не ведут к гибели птицы. Идентичность аминокислотной последовательности при сравнении трех штаммов составляла 72,3 — 92,8 %, при сравнении с вирусами группы 1 — 53,8 — 61,7 %. Данные штаммы отличаются также от шт. Массачусетс 41 и Д1466 (идентичность 47,5 - 55,7 %). Штаммы N1/88, 03/88 и VI8/91 образуют новую группу вирусов, генотипически отличающуюся от всех, ранее охарактеризованных. Не установлено корреляции между аминокислотной последовательностью S1 и нефропатогенностью. Морфологически ВИБ типичный коронавирус.

В трупах павшей птицы вирус быстро теряет инфекционную активность; в питьевой воде при комнатной температуре он сохраняется 11 ч; в пораженных тканях, в 50 %-ном растворе глицерина при температуре 4 °С — до 80 дней; в аллантоисной жидкости при температуре 37 °С — 3 дня, при 20—30 °С — 24 дня, при 4 °С — 427 дней, при -25 °С — 537 дней. В инфицированной аллантоисной жидкости при температуре -30 °С вирус активен 17 лет.

Большинство штаммов ВИБ кур инактивируется за 10 мин при 56 °С, однако среди них встречаются варианты, различающиеся по терморезистентности. Все штаммы ВИБ относительно резистентны к кислой среде (рНЗ,0) и чувствительны к щелочной среде (рНП), чувствительны к хлороформу и дезоксихолату натрия. Некоторые из них (Ве-42 и Connauqht) после обработки эфиром обладают остаточной инфекцион-ностью. По чувствительности к эфиру и прогреванию при 45 °С в течение 90 мин все штаммы ВИБ разделены на три группы: первая группа включает Ве-42 и Connauqht — штаммы, чувствительные к двум обработкам; вторая группа включает шесть штаммов, которые относительно резистентны к эфиру, но чувствительны к прогреванию при 45 °С в течение 90 мин; в третью группу входят шт. В-41 и КН, которые резистентны к эфиру и прогреванию. При лиофилизации все штаммы резистентны к трипсину, очень чуствительны к ультрафиолетовому облучению. Глюкоза (10 %-ный раствор) стабилизирует вирус. Под действием УФ-лучей ВИБ разрушается через 18—24 ч. Солнечные лучи инактивируют его при 36—38 °С за 3 ч; 1 %-ные растворы фенола, крезола, формалина, 70 %-ный этиловый спирт и р-р соды (1:10000) обезвреживают в течение 3 мин.

Антигенная структура. ВИБ имеет два гликопротеина: поверхностный S и мембранный М. Белок SP этого вируса состоит из двух гл и ко протеидов SP1 и SP2, образующихся в результате посттрансляционной модификации. Пепломерный белок путем протеолиза был разделен на две части: N-терминал S1 и С-терминал S2 гликопепти-да. Белки ВИБ различаются по тканевому тропизму. Изменение патогенности штаммов вируса связано с изменением изоэлектрических точек их белков, поэтому классификация белков на основе изоэлектрических точек позволяет идентифицировать высокопатогенные и персистентные штаммы. У четырех английских штаммов, принадлежащих к трем разным серотипам ИБ, Sl-белки различаются по аминокислотному составу только на 2—3 %. Их аминокислотные последовательности были также очень близки аминокислотным последовательностям Sl-белков трех голландских изолятов (D207, D274 и D3896). С использованием 16 монАТ были обнаружены общие эпитопы ВНА у всех 8 изолятов, хотя поликлональные сыворотки дифференцировали их только на три серотипа. Эпитопы ВНА локализованы на первой и третьей четвертях S1 — белка. Серологические, эпизоотологические исследования ИБ должны быть дополнены анализом данных по секвенированию нуклеиновой кислоты и по взаимодействию с монАТ. Белки S, М и N ВИБ имеют мол. м. 84-87, 90-91 и 27-30 кД соответственно. Различают несколько европейских (z4) и американских (z4) серотипов, АГ связанных между собой. Сероспецифические эпитопы вируса локализованы, в основном, в первых 300 аминокислотных остатках пепломерного белка S. На поверхности ВИБ обнаружено пять АГ эпитопов: А, В, С, D и Е, из которых первые четыре ответственны за нейтрализацию вируса. Из 16 монАТ все реагировали с белками пепломеров, а один тип AT нейтрализовал инфекционность и подавлял ГА-активность вируса.

Антигенная активность, антигенная вариабельность и родство. Переболевание птицы сопровождается образованием анти-ГА, ВНА и практически пожизненным иммунитетом к гомологичному типу вируса. АГ-свойства вируса ассоциированы с шипами вирусной мембраны, состоящими из ди - и тримерного белка пепломера Е-2. Эти свойства связаны с субъединицей S1. Кроме основного белка S, у ВИБ в меньшей степени участвует в индукции ВНА также и белок М, он ответствен за синтез ингибиру-ющих ГА AT. Гуморальные ВНА появляются через 2 недели после заражения, между 6 — 8-й неделей титр их достигал максимума и далее до 20-й недели оставался постоянным, после чего снижался. У кур-реконвалесцентов ВНА обнаруживались через 482 дня.

ПА появлялись в сыворотке крови через 2—3 недели, но исчезали раньше, чем ВНА. При повторном заражении уровень ПА повышался. У экспериментально инфицированных 8-недельных цыплят они были выявлены на 10-й день и сохранялись в течение 10—14 дней, после чего процент цыплят, положительно реагирующих в РДП, постепенно снижался. Через месяц после заражения только 39,5 % цыплят имели ПА, а через 2 месяца они не были выявлены ни в одной исследованной сыворотке. В крови кур-реконвалесцентов найдены КСА.

Показана АГ - и иммуногенная вариабельность полевых штаммов ВИБ. Четко определены семь серотипов: A(D207), B(D3896), C(D3128), D(D212), Массачусетс (Mass), ИК11 и ИК12. В пределах указанных серотипов известны следующие штаммы: Массачусетсе, Коннектикут А5968, Айова-97, Айова-609, Грей, Холт, УМК Армиленд, Брисбеин, КН, Нерима, Ишида, Шида.

Выделен АГ вариант вируса, который отнесен к типу Индиана, и новый нефропа-тогенный АГ отличный вирус Р-84084. Антисыворотка к шт. Коннектикут А5968 нейтрализует все вышеуказанные гетерологичные штаммы, за исключением шт. Ишида. С помощью фингерпринтного анализа (теста «отпечатки пальцев») нуклеотидов РНК датских штаммов выделены две группы вирусов. В 1-ю группу из них вошли шт. Н52, Н120, D387, 1259, 1385, 1397, у которых установлено 99 % гомологии; во 2-ю — шт. D207, D274, D212, D1466, D3128, D3896, имевшие 95 % гомологии. Большинство выделенных в Нидерландах полевых изолятов ВИБ отличались по АГ составу от серотипов Массачусетс и датских серотипов D274, D1466, D3128. Поэтому возникла необходимость создания новой вакцины. Выделенные в нашей стране штаммы вируса в большинстве случаев имели родство с серотипом Массачусетс и значительно реже встречались штаммы, относящиеся к серотипу Коннектикут.

Проведено исследование генетических различий у изолятов вируса инфекционного бронхита (ВИБ), выделенных от цыплят - бройлеров в штате Миссисипи — амплификация и секвенирование сегмента в 582 пары оснований терминальной части гена S1 нуклеотидного белка 26 изолята типа Арканзас. Р-ПЦР И цикл секвенирования использовали для выявления генетической расшифрованной аминокислотной взаимосвязи между изолятами. Проведенный анализ показал, что нуклеотидные и аминокислотные последовательности изолята из Миссисипи были высоко консервативны и уровень их нуклеотидной гомологии оказался выше и составил 99,4 %, а аминокислотной — 98,4 %. Изоляты из Миссисипи имели менее 2,3 % нуклеотидных и 5,2 % аминокислотных различий с вакцинным штаммом Ark DPJ и менее 30 % нуклеотидных и 5,2 аминокислотных различий с изолятом варианта Джорджия Ark. Предполагается, что 26 изолятов ВИБ, генетически близкородственных вакцинному штамму, произошли в результате появления точечных мутаций в геноме этого штамма. Результаты также показали, что тип Ark ВИБ, циркулирующий в течение года в штате Миссисипи, генетически мало изменился или не изменился совсем. Выявление 21-го идентичного изолята ВИБ на различных птицефермах и комплексах явилось следствием особого контроля за распространением инфекционного бронхита среди бройлеров. Все 25 выделенных изолятов вируса ИБП (ВИБП) оказались близкородственными, но отнесены к изученным группам (на основании перекрестной реакции нейтрализации и полного анализа нуклеотидной последовательности S-1-гена. Они были отнесены к серотипу ДЕО 72. Сформирована отдельная группа вирусов ИБП, названная ее новым серотипом Джорджия-98.

Предполагается, что возбудителем SARS (тяжелый острый респираторный синдром — атипичная пневмония) является новый вид коронавирусов. Анализ гомологии последовательностей главных структурных белков вируса, включая S, М и N из 17 штаммов SARS-вируса, опубликованных Генбанком, и 11 штаммов других коронавирусов показал, что корреляция почти отсутствует между каждым штаммом SARS и другими штаммами коронавирусов, в особенности, изолированными в Китае. Результаты могут иметь большое значение для научных исследований по эпидемиологии и источнику патогена SARS и клинической практики КНР.

Генетическая группировка изолятов ВИБ, основанная на гипервариабельной области HVR1 (области 168—197), совпадает с группировкой, основанной на целом гене S1. Тайваньские изоляты ВИБ не удалось поместить в существующие группы. Тест нейтрализации использован для сравнения 9 тайваньских изолятов ВИБ из разных генотипов со стандартными штаммами Massachusetts (HI20) и Connecticut. Показано, что: 3 тайваньских изолята отличаются по серотипу от стандартных штаммов; они относятся к двум серотипам, коррелирующим с их генотипами. Тайваньские изоляты разбиты на группы с высокой, промежуточной и низкой патогенностью. Не установлено корреляции между патотипом и генотипом. С помощью специфических праймеров клонировали ген нуклеокапсида (N) нефропатогенного штамма X ВИБ. Сравнение последовательности N-гена штамма X с таковой 10 других штаммов ВИБ выявило наличие в N-гене штамма X 136 рассеянных сайтнаправленных мутаций. Гомология между штаммом X и некоторыми другими штаммами ВИБ варьировала от 86,26 до 99,67 %. Наибольшая гомология была выявлена между Х - и N-штаммами, принадлежащими к нефропатогенному типа ВИБ. Полученные результаты указывают на относительную консервативность N-гена ВИБ.

К ВИБ в естественных условиях восприимчивы куры всех возрастных групп, наиболее восприимчивы до 30-дневного возраста. Человек восприимчив к ИБ и перебо-левает с легкими признаками поражения верхних дыхательных путей.

Развитие инфекционного процесса сопровождается виремией с локализацией вирусного АГ в лейкоцитах и эритроцитах в течение 16-дневного после заражения. Вирулентные штаммы вируса инфицируют и разрушают реснитчатые эпителиальные клетки, выстилающие трахею. Вирус локализуется в субэпителиальных клетках и обнаруживается в них в течение 21 дня, и в селезенке — до 49 дней. Авирулентный вирус локализуется там же, но инфицирует только часть эпителиальных клеток. У птиц, зараженных контактно, вирус обнаруживают в глотке и трахее через 7, 14, 21 и 27 дней, а в почках — через 35 дней. У цыплят, зараженных интратрахеально, вирус в трахеаль-ной слизи выявляли в течение 5 недель после заражения. Показана возможность ви-русоносительства переболевшей птицы. Наличие инфекции в одном и том же хозяйстве в течение ряда лет свидетельствует о том, что выздоровевшие птицы остаются носителями вируса. Инокулировали 17-дневные куриные эмбрионы 8 различными штаммами вируса ИБ, которые представляют различные серотипы. На 2- и 5-й дни после заражения собирали ткани для гибридизации in situ с антисмысловым рибозон-дом к МРНК, Кодирующей белок мембраны. Во всех случаях на 2-й день выявили интенсивное окрашивание в цитоплазме, в эпителиальных клетках трахеи, легких, бурсы и кишечника. На 5-й день окрашивание было слабым или отсутствовало. Однако в клетках почек выявлялось многоочаговое окрашивание со штаммами Вольге-мут, Грэй, JMK и Масс41. Селезенка не содержала вирусную РНК.

Персистенция ВИБ, ее сроки зависят от штамма. Так, шт. Kagoshima-34 размножался и персистировал, в основном, в почках, а шт. Tottori-2 дольше персистировал в легких.

Экспериментальная инфекция. Ее можно вызвать при интратрахеальном, интрана-зальном, подкожном, внутримышечном, интраперитонеальном и клоачном заражениях цыплят. Однако интратрахеальный метод заражения более надежный. Инкубационный период продолжается 18—36 ч, но может затянуться до 6 дней и более, если инфицируют цыплят, содержащих материнские AT. Длительность инкубационного периода зависит также от дозы и пути введения вируса. При аэрозольном методе заражения симптомы болезни у цыплят проявляются уже через 18—24 ч.

После инфицирования респираторного тракта ВИБ локализуется и размножается в эпителиальных клетках яйцевода и остается там в течение 6—24 дней после инфекции. Инфицированный яйцевод становится инфантильным или кистозным. Вирус персистирует в организме кур не менее 30—45 дней. Из клоаки его выделяют чаще, чем из трахеи.

Кроме цыплят, можно заразить обезьян макака-резус и пещерных летучих мышей. Индейки невосприимчивы, однако при интравенозном введении вируса возникает виремия в течение 48 ч. Мышата-сосуны восприимчивы к шт. Боддет при интрацере-бральном заражении. Штаммы, прошедшие небольшое число пассажей на КЭ, для мышей непатогенны. Получен вирулентный вирус ИБК (ВИБК). После 10 пассажей на однодневных SPF-цыплятах штамма Д971 получен вирулентный штамм D97L)io. Вирулентность его на однодневных цыплятах составляла выше 106-45 ЭЛД5о/о,2 мл или 1015ЛД50/мл. У зараженных цыплят проявлялись типичные клинические признаки ИБК.

Культивирование. Удается в КЭ при заражении в аллантоисную полость, амнион или на ХАО. Адаптация ВИБ к КЭ происходит параллельно с возрастанием процента и сокращением срока гибели их. Заражают обычно 9—10-дневные КЭ. Адаптация вируса наступает через 3—6 и более пассажей. Зараженные КЭ погибают через 3—6 дней в 1-м пассаже до 10 %, в 5-м — до 61 ив 9-м — до 83 % И более. Однако гибель КЭ — не единственный признак заражения ВИБ. Характерно замедление их роста через 6—7 дней после заражения и увеличение количества экстраэмбриональной жидкости. Инфицированные КЭ шарообразной формы, мумифицированы, мельче, чем здоровые. Такой «эффект карликовости» — патогномоничный признак для ВИБ, имеет диагностическое значение при выделении полевых изолятов на КЭ. Кроме того, у инфицированных КЭ желток обычно сморщен, постоянно поражены почки и повышено содержание уратов. ХАО и амниотическая оболочки отечны, объем аллантоисной жидкости увеличен. При введении вируса в аллантоисную полость наивысшая концентрация его обнаруживается через 36 ч после заражения в ХАО, затем в аллантоисной жидкости, амнионе и печени эмбриона. Если погибшие эмбрионы остаются на некоторое время в инкубаторе, титр вируса снижается.

Максимальный выход вируса 107.2 ИД50/о,1мл выявляется при заражающей дозе 103 ЭИД50/0.1 мл в условиях 36 °С. Более высокие заражающие дозы не увеличивают общего «урожая» вируса. Подбор оптимальной температуры и продолжительности культивирования является важным для повышения «урожая», если иметь в виду, что в аллантоисной жидкости погибших КЭ обнаружено интерферирующее вещество. Различные штаммы ВИБ могут при изменении температуры проявлять различную вирулентность для КЭ и органных культур, что отражает их вирулентность и тропизм.

Большинство штаммов вируса размножается в культуре клеток почки КЭ, фибробластов КЭ и ВНК-21. В клетках Mela никакие штаммы ВИБ не размножались. Органные культуры яйцеводов оказались высокочувствительными к инфицированию вакцинным шт. Н52. Однако, прежде чем вирус приобретает способность размножаться в первичной культуре клеток и органных культурах трахеи кур, его нужно адаптировать к КЭ. Вирус, адаптированный к мозгу мышей-сосунов, может обусловить прямую реакцию ГА и реплицироваться в клетках Vero. Титры вируса в этой культуре достигают 4,6—5,0104 БОЕ/мл. Культура клеток легкого и почек КЭ в 40—60 раз чувствительнее культуры клеток печени. Вирус также можно культивировать в органной культуре трахеи КЭ. ЦПД его в культуре клеток почки КЭ проявляется образованием синцития с последующим некрозом. Синцитий появляется через 6 ч, а через 18—24 ч он увеличивается, включая 100 и более ядер.

Все штаммы ВИБ в присутствии трипсина в среде покрытия 20—40 мкг/мл на 3—4-й день инкубации образуют бляшки до 6 мм в диаметре. Титр вируса в присутствии трипсина для разных штаммов достигает 3,ЗТ05 БОЕ/мл. Все изученные 17 австралийских штаммов ВИБ образовывали бляшки на 2-м пассаже в культуре клеток почки КЭ, которые различались по срокам их появления, размерам (от 2 до 5 мм) и внешнему виду. Хотя метод культивирования на КЭ в 18—84 раза более чувствителен метода бляшек, однако титрование методом бляшек оказалось более точным. Половые гормоны (эстраген, тестостерон, кортизон) повышают продукцию вируса в органных культурах трахеи. Из многих штаммов шт. Beaudette индуцирует бляшки в культуре клеток ВНК-21, на этих клетках из этого штамма, после обработки его мутагеном, был изолирован ts-мутант. Чувствительность перевиваемой линии клеток эмбрионов кур к ВИБ охарактеризована после 5 серийных пассажей. Репликация вируса определялась по цитопатическому эффекту с помощью ЭМ, НМФА и ОТ-ПЦР. Через 96 ч после инфекции ЦЭ составлял 75 %, клетки округлились, «сползали» в ЭМ, был виден коронавирус. Цитоплазматическая флуоресценция появлялась уже через 24 ч после инфекции, прогрессировала и все время соответствовала уровню вирусной РНК ВИБ инфицированных клеток, которая была выявлена в RT-PCR. Уровень внеклеточного вируса был измерен титрованием на клетках почки цыпленка и в куриных эмбрионах. В культуре клеток и КЭ относительные титры через 24—120 ч после инфекции колебались от 4,0 до 6,0 lg EIDso/cm3 на куриный эмбрион и от 2 до 6,0 lg TCIDso/cm3-Линия клеток CER оказалась пригодной для изучения вируса М41.

Особенности репродукции. Дефектная РНК (дРНК) CD-61 штамма Beaudette ВИБ Реплицируется и упаковывается при использовании 4 гетерологичных штаммов ВИБ (М41, Н20, HV10 и D207) в качестве вирусов-помощников. Секвенирование геномных РНК этих штаммов ВИБ показало, что уровень нуклеотидных различий составляет до 17 % в лидерной последовательности (ЛП) идо 4,3 % во всей смежной 5'-не-транслирующей области (5'-НТО). Анализ 5'-концов спасенных дРНК обнаружил, чтоЛП штамма Beaudette, присутствовавшая в CD-61, заменилась на ЛП штамма-помощника, но 5'-НТО соответствует исходной последовательности CD-61. Эти данные показали, что феномен переключения ЛП, описанный ранее для вируса гепатита мышей и бычьего коронавируса, наблюдается и во время репарации дРНК ВИБ. В 5'-НТО ВИБ имеются 3 предсказанные шпилечные структуры, первая из которых проявляет высокую степень ковариации среди штаммов ВИБ, что является филогенетическим доказательством существования этой структуры и ее возможного участия в репликации ВИБ. Первым событием процессинга полипротеина ВИБ является протеолиз пептидной связи глиб73-глиб74 под действием первого домена папаино-подобной протеазы PLPD-1 с освобождением зрелого белка 87 кД. Продукт, кодируемый областью нуклеотидов 2548—8865 ВИБ, расщепляется по дипептидной связи ГЛИ2265-ГЛ И2266 с образованием N-концевого белка 195 кД и С-концевого белка 41 кД. С использованием антисыворотки, полученной к последовательности ВИБ, кодируемой нуклеотидами 8865—9786, белок 33 кД, представляющий ЗС-подобную протеи-назу специфически иммунопреципитируется из зараженных клеток.

Большинство штаммов ВИБ не агглютинируют эритроциты птиц, однако при обработке вируса фосфолипазой С типа 1 он легко вызывает ГА. Энзим модифицирует оболочку вируса за счет разрушения фосфолипидов и вызывает появление на поверхности вириона ГА. Кроме того, ГА-свойства обоих типов ВИБ проявляются после обработки их 0,5 % раствором трипсина (90 мин при 37 °С), который разрушает пептидные связи аргинина и лизина поверхностных молекул вирусного белка и освобождает скрытые молекулы ГА. У глубокоадаптированных к КЭ штаммов (подобных шт. Beaudette), имеющих высокий инфекционный титр после обработки трипсином, фосфолипазой С, нейраминидазой ГА активность не проявляется. Феномен объясняется изменением физической и химической структуры вирусного белка, связанной с потерей патогенности и иммуногенности вируса для птицы. В настоящее время уточнено, что шт. Коннектикут (Konnekticut) способен агглютинировать эритроциты кур, в то время как шт. Массачусетс (Massachusets) подобную активность проявляет только после обработки трипсином или фосфолипазой С. Отработан метод изготовления ГА антигена из изолятов ВИБ. Лиофилизированный ГА сохранял активность при -20 °С в течение 8 недель, при 4 °С в эти же сроки терял до 50 % ее. Титр ГА вируса повышается до 1:256 — 1:512 при его пассажах в трахее кур или клеточной культуре трахеи кур.

Гемадсорбирующие свойства не установлены.

Штаммы ВИБ различаются по интерферониндуцирующей способности. Так, из 10 штаммовтолько 3 (шт. IB-41, Нерима и Ишида) не индуцировали синтез интерферона в КЭ, тогда как остальные вызывали образование его до 190 ед.

Источники и пути передачи инфекции. Основным источником инфекции служат больные и переболевшие цыплята и куры, которые выделяют вирус во внешнюю среду или остаются вирусоносителями до 49-105 дней после переболевания. Выделение вируса из организма больной птицы происходит со слюной, истечениями из носа и глаз, с фекалиями. Птица заражается, в основном, аэрогенным путем, а также при приеме инфицированного корма и воды. Распространение инфекции возможно также через инфицированную внешнюю среду: помещения, кормушки, подстилку, одежду и обувь обслуживающего персонала. Кроме того, человек может быть и активным переносчиком вируса в период переболевания птицы ИБ. У петухов вирус выделяется со спермой в течение 20 дней после заражения, поэтому возможно заражение половым путем. Кроме того, вирус передается трансовариально при остром, хроническом и бессимптомном течениях болезни. Доказана возможность выделения его из яиц, полученных от кур через 1, 2, 4 и 6 недель после их заражения. Выделен вирус из яиц, полученных от кур в ранний период снижения яйценоскости, а у 30 % цыплят, выведенных из таких яиц, отмечали отечность. От этих цыплят удавалось выделить возбудителя ИБ. Вирус изолирован из желтка и белка яиц с глубоким поражением скорлупы, которые были получены от кур из хозяйства, неблагополучного по данной болезни. Таким образом, поколеблено прежнее представление об ИБ, как о заболевании только с горизонтальным путем передачи инфекции. Штамм птичьего вируса инфекционного бронхита был изолирован от курицы из группы птиц с симптомом снижения яйценоскости. Изолированный вирус в куриных эмбрионах интерферировал с ВНБ, приводил к снижению роста куриного эмбриона и вызывал агглютинацию эритроцитов цыпленка после обработки трипсином.

Иммунитет и специфическая профилактика. Переболевшая птица резистентна к заражению гомологичным штаммом вируса в течение 5—6 месяцев. Трудность в проблеме специфической профилактики обусловлена большой естественной АГ и иммунологической вариабельностью полевых штаммов вируса. К вирусу ИБ высокорезистентны цыплята линии С и высокочувствительны линии 151. Для профилактики инфекции применяют живые и инактивировакные вакцины. Отработана технологическая схема изготовления как моновалентных инактивированных форм вакцин против ИБ, БН, ИББ, синдрома снижения яйценоскости. Испытания поливалентной вакцины показали наличие высокого уровня AT к вирусам ИБ, БН, ИББ, ССЯ76 после вакцинации инактивированными вакцинами. Специфическая профилактика болезни включает применение живых и инактивированных вакцин: первые — в стадах бройлеров и ремонтного молодняка мясных и яичных кур (первичная обработка), вторые — в стадах кур-молодок в возрасте 14—18 недель. Во ВНИИЗЖ налажено производство живой вакцины из штамма Н-120. Для создания длительного и напряженного иммунитета против инфекционного бронхита кур (ИБК) в стадах яичной и мясной птицы проводят комплексную обработку 2—3 раза живой вакциной в возрасте 1 — 14 недель, а затем инактивированной — в 14—18 недель. При вакцинации против ИБК, Вызванного вариантными штаммами вируса, рекомендуют использовать инактивиро-ванную вакцину. В указанном институте разработана технология инактивированной моновалентной вакцины против ИБК и ассоциированной против ИБК, Болезни Ньюкасла и синдрома снижения яйценоскости.

Применение инактивированных вакцин. Достаточно эффективными оказались эмульгированные вакцины из концентрированного вируса. Введение инактивированной вакцины в 3- и 16-недельном возрасте дало такой же эффект, как и прививка живыми вакцинами: первый раз вакциной Н-120 (120 в КЭ) и вакциной из шт. Н52 (52-й пассаж вируса в КЭ). Наиболее выраженный иммунный ответу 100 % цыплят получен при вакцинации в 3-недельном возрасте живой вакциной из шт. Н120, а в 16-недельном возрасте — инактивированной эмульсинвакциной. Рекомендовано при конструировании инактивированных вакцин против ИБ использовать несколько штаммов (создавать поливалентную вакцину). Приготовленная в Китае вакцина против ИБК из штамма D и инокулированная цыплятам через 10—14 дней индуцировала антитела к ВИБК, которые обнаруживались через 21 день у 85 % птиц; вторая инокуляция, проведенная через месяц, защищала к 6 месяцу 87—100 %.

Применение живых вакцин. Штаммы, полностью утратившие вирулентность, практически неиммуногенны. Поэтому живые вакцины готовят из аттенуированных штаммов, обладающих различной степенью остаточной вирулентности. Для первой прививки применяют более аттенуированные и менее иммуногенные штаммы, для второй — более вирулентные. Живые вакцины применяют орально ( с питьевой водой) или путем закапывания в нос. Введение живой вакцины в зоб цыплятам создавало устойчивость к заражению без образования циркулирующих AT. Эти данные свидетельствуют О Важной роли местного иммунитета при ИБ. Материнские AT от иммунных кур-несушек передаются через яйцо цыплятам, которых они защищают в первые 2—4 недели жизни от ИБ. Период полужизни материнских AT составляет немногим более 5 дней. Со второй недели жизни титр их начинает снижаться. Оптимальный возраст для вакцинации цыплят живыми вакцинами составляет 2—3 недели. Учитывая корреляцию титра ВНА в сыворотках крови кур-несушек и в желтке яиц, предложено использовать последние для оценки иммунитета в РН. Яйца, снесенные в течение 60 дней, после повторной вакцинации содержат высокий уровень (концентрацию) AT.

Последовательная вакцинация живыми вакцинами разных типов обеспечивает накопление в сыворотке крови птиц широкого спектра AT, которые превосходили даже типы, примененные для вакцинации. Полученный от иммунизации против ИБ молодняк за счет материнских AT IgG-класса устойчив к заражению патогенным вирусом. Вирусспецифический IgG обнаружен и в желтке яиц больных И Б кур в течение 60 дней. Определяли эффективность живых аттенуированных вакцин Ма5 и 4/91 против нефропатогенной линии ВИБ (ИВ, В1,648). По каждому параметру одна вакцина Ма5 обладала плохими защитными свойствами. Вакцина 4/91 одна или в комбинации хорошо защищала почки цыплят-бройлеров.

Сотрудниками ВНИВИП создана живая вакцина из аттенуированного штамма ВИБ. В неблагополучных пунктах иммунизируют всех цыплят в 10—15-дневном возрасте двукратно через 14—15 дней. Ревакцинируют птиц в 100—120-дневном возрасте. Вакцину вводят интраназально или с питьевой водой. В последние годы в России применяют вакцины против ИБ производства различных зарубежных фирм.

Температурочувствительный мутант ВИБ (тип Арканзас) получен путем серийного пассирования при пониженной температуре (35—28 °С). Вирус, в основном, размножался в верхних дыхательных путях и очень слабо в других органах. Он оказался авирулентным для 3—7-дневных цыплят-бройлеров. Доза вакцины, обеспечивающая 100 % защиту привитой птицы, составляла 103— 105 ЭИД50- Вакцинация 2-недельных цыплят аэрозольно или закапыванием в глаз вакцины из шт. Н120 создавала устойчивость примерно к 31-му дню.

При оценке различных программ вакцинации против ИБ в компании Питман Моор сравнивали титры AT в реакциях задержки гемагглютинации и нейтрализации. Цыплят первый раз иммунизировали в возрасте различными живыми вакцинами, а повторно — в 16-недельном возрасте инактивированными адьювант вакцинами из шт. М41 или GV101. В итоге установлено, что уровень AT у привитых цыплят был выше к вирусу М41, чем к вирусу серотипа Д207. У птиц, иммунизированных вакциной из шт. М41 и ревакцинированных убитой вакциной из двух штаммов, имелись более высокие титры AT к серотипам Массачусетс и Д207. Аттенуированные вакцинные шт. Массачусетс 33 и HI20 персистируют в трахее и легких с 3 до 13 дней после вакцинации.

Эффективность живых аттенуированных вакцин Ма5 и 4/91 против нефропатогенной линии вируса инфекционного бронхита (ВИБ) изучали по макро - и микроизменениям в почках, используя ПЦР для определения РНК ВИБ в ткани почек. По каждому параметру одна вакцина Ма5 обладала плохим защитным свойством. Вакцина 4/91 одна или в комбинации хорошо защищала почки цыплят бройлеров. Сообщается о конструировании рекомбинантного бакуловируса, экспрессирующего гликопротеин S1 изолята SD/97/01 вируса инфекционного бронхита. Методом обратной транскрипции-ПЦР амплифицированакДН К длиной 1,5 т. п. н. содержащая ген нуклеокапсидного белка N китайского изолята ВИБ и клонирована на векторе pUCl 19. Полученная плазмида охарактеризована методами рестрикционного анализа, дот-гибридизации и Саузерн-блот-гибридизации.

Связь титров антител с резистентностью. Нет прямой зависимости напряженности иммунитета от уровня ВНА. В резистентности птицы важную роль играет местный тканевой иммунитет респираторного тракта. Цыплята, вакцинированные аэро-зольно живым вирусом, резистентны, даже если в сыворотке крови нет специфических AT. Установлена прямая зависимость между устойчивостью птицы к заражению вирулентным вирусом и наличием обширных гистопатологических изменений в гарднеровых железах после вакцинации.

Оценку степени иммунитета у вакцинированных цыплят можно проводить по активности реснитчатого эпителия трахеальных эксплантатов, полученных после трахеального контрольного заражения. Интраназальная или интраокулярная иммунизация суточных цыплят с наличием материнского иммунитета вакцинным шт. Н120 обеспечивает устойчивость против интратрахеального заражения патогенным ВИБ. Эффективность вакцинации против ИБ вакцинами из шт. Массачусетс и Арканзас оценивается на основании выделения ВИБ из трахеальных тампонов после недельного периода заражения в полевых условиях.

Установлена иммунологическая совместимость вирус-вакцины из шт. Н120 ВИБ и вирус-вакцины из шт. Бор74 ВГНКИ вируса НБ при ассоциированном применении аэрозольным способом. Продолжительность иммунитета против ИБ и НБ составляла 120 дней.

Попытка разработать способ вакцинации против ИБ in ovo не дала явно положительных результатов. Вакцины Iboral 1 или Bioral H120 приводили к развитию лишь незначительных поствакцинальных реакций со стороны респираторной системы у вылупившихся цыплят. На 15-й день после вакцинации (12-й день после вылупле-ния) в сыворотках цыплят определялись повышенные титры AT в РЗГА по сравнению с контролем. Вакцина iboral 1 приводила к некоторым нарушениям диаграммы вы-лупления.

Серологическая оценка поствакциншьного иммунитета. Эффективность вакцины оценивается по разным критериям, из которых основным являются клинический ответ, носительство и диссиминация вируса, реакция трахеального эпителия in vivo и in vitro, защита от вирулентного гомологичного и гетерологичного типов ВИБ, образование секреторных и гуморальных AT Для оценки профилактической эффективности вакцинации цыплят против И Б предложен клиренс-тест.

Высокий уровень AT достигается к концу 3-й недели и регистрируется в течение года. На прививку инактивированной вакциной ВНА в сыворотках крови цыплят и кур появляются с 7—14-го дня в титрах 5—7 log2, нарастают к 30—60-му дню до 8—10,5 log2 и сохраняются на таком уровне до 6 месяцев.

В желтке яиц, полученных от кур-реконвалесцентов, имеются AT, которые затем передаются цыплятам. Уровень их у цыплят сразу же после вылуплен ия высокий, затем в течение 4 недель постепенно снижается. Пассивные AT не предотвращают респираторную инфекцию у цыплят, но несколько ослабляют течение болезни. Материнские AT обеспечивали устойчивость цыплят к заражению в течение 3 недель.

Для определения напряженности иммунитета у вакцинированной птицы после ее заражения вирулентным вирусом предложен метод выявления вирусного АГ с помощью флюоресцирующих AT Кроме того, предложена оценка поствакцинального иммунитета на основе активности ресничек в кольцах трахеи. При изучении гуморального иммунитета установлена тесная корреляция между активностью реснитчатого эпителия и выделением вируса из тканей, что послужило основанием рекомендовать первый тест в качестве критерия оценки местного иммунитета при определении перекрестного иммунитета. Однако корреляция между уровнем AT и численностью подверженных к заражению ВИБ птиц незначительна. Резистентность связана с клеточным опосредованным иммунитетом, что подтверждено методом бласттрансформации лимфоцитов и реакцией гиперчувствительности замедленного типа.

Оценка иммунитета у птиц, привитых инактивированными вакцинами, основана на обнаружении ВНА и ПА. Обычно через 2 недели после второй вакцинации индекс нейтрализации составляет 3 lg. С помощью ИФА можно достоверно оценить как поствакцинальный, так и постинфекционный статус у экспериментально зараженных птиц. Метод не является специфическим для серотипирования ВИБ, но высокочувствителен для выявления AT в сыворотке крови. Данные, полученные методом ИФА при оценке иммунного статуса, хорошо совпадают с результатами, полученными в других серологических реакциях: РН, РЗГА, вирусовыделения и реакции ткани трахеи.

Установлена тесная корреляция между активностью мерцательного эпителия и гистологическими изменениями, вызванными вирусом, и незначительная — между титрами AT (в РН и РИГА) и напряженностью иммунитета. Однако не установлено корреляции между показателями клеточного и гуморального иммунитета у цыплят, иммунизированных инактивированной эмульсинвакциной. Установлена корреляция титров ВНА в сыворотках крови и желтках яиц и вакцинированных кур.